中国农业大学土地学院廖人宽教授课题组在PNAS发表合成DNA示踪技术的最新成果

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文章导读
微纳塑料可经食物链进入生物体,但现有方法难以在复杂植物体系中同时区分不同粒径和来源,迁移路径因此难以厘清。中国农业大学廖人宽教授课题组在PNAS发表研究,利用封装特异性合成DNA短链并结合qPCR,实现对200 nm、700 nm及栽培基质残留、大气沉降、灌溉水携带三类微纳塑料的高分辨率示踪,揭示蒸腾拉力、粒径和来源如何影响其吸收与叶片富集。这项技术将如何推进植物污染风险评估?
— 内容由好学术AI分析文章内容生成,仅供参考。

近日,土地科学与技术学院廖人宽教授课题组在合成DNA标记技术应用于土壤-植物系统微纳塑料迁移示踪研究方面取得重要进展。相关成果在《美国国家科学院院刊》(Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America)上发表研究文章《中文题目:超高分辨率合成DNA示踪技术量化植物体中微纳塑料迁移》(Synthetic DNA fragments as ultra-high-resolution multitracers to quantify transport behavior of micro- and nanoplastics in plant systems)。

微纳塑料(MNPs)作为一类备受关注的新兴污染物,在水体、土壤-地下水系统、大气、冰雪及沉积物中均有分布。各项研究表明,MNPs可通过食物链进入生物体内,构成全球性的持久性污染问题。当前研究主要采用气相色谱-质谱、荧光标记以及稀土金属元素标记等方法探究植物吸收MNPs的微观机制及影响因素。然而,现有方法难以同时区分不同粒径、不同来源的MNPs,无法有效识别复杂体系中多种MNPs的迁移行为。

中国农业大学土地学院廖人宽教授课题组在PNAS发表合成DNA示踪技术的最新成果

图1 合成DNA短链序列封装在MNPs中的制备示意图

针对上述难题,该研究构建了一种结合特异性合成DNA短链序列标记和实时荧光定量PCR(qPCR)检测的MNPs示踪标记方法。研究将合成DNA短链序列封装在不同的MNPs中(图1),量化分析了不同粒径(200 nm和700 nm)和不同来源(基质残留、大气沉降和灌溉水携带)MNPs在植物体中的迁移规律。利用该方法,不仅定量表征了蒸腾拉力对植物吸收MNPs的影响,还实现了对同一植物体系中不同粒径及来源MNPs的精准区分。

中国农业大学土地学院廖人宽教授课题组在PNAS发表合成DNA示踪技术的最新成果

图2 植物对不同来源MNPs的吸收(A、B图分别为第10天和第30天植物对不同来源MNPs的吸收差异;C图为植物对不同来源MNPs的富集因子和转移因子;D图为不同来源MNPs在植物组织中的占比)

研究结果表明,蒸腾拉力和粒径是影响MNPs在植物体中迁移的重要因素。高蒸腾拉力增强了植物对MNPs的吸收,并促进其由根部向地上部迁移,使其最终在叶片中富集;而在低蒸腾拉力下,植物对MNPs的吸收量明显降低,且MNPs主要滞留于根部。小粒径MNPs表现出更强的植物吸收和迁移能力,更容易到达叶片;相比之下,大粒径MNPs的吸收量较低,且向上迁移受限。就植物吸收MNPs来源而言,栽培基质中的MNPs由于基质吸附等原因,植物吸收效率最低;大气沉降的MNPs可以被叶片直接吸收,并随植物叶片发育和叶面积增大而明显提高;灌溉水携带的MNPs由于充分的根系接触及蒸腾拉力的驱动等原因,表现出最高的吸收效率,并主要富集于植物叶片(图2)。

中国农业大学土地科学与技术学院2025级博士研究生段兆飞和2022级博士生王常茜为共同第一作者;廖人宽教授为唯一通讯作者;博士研究生廖妍羚和李鑫林、沈重阳教授以及水利与智能工程学院熊云武教授,复旦大学仰大勇教授,美国加州大学河滨分校Jirka Šimůnek教授以及康奈尔大学Dan Luo教授为合作作者。论文第一作者段兆飞为中国农业大学研究生交叉人才培养专项学生。该研究受国家自然科学基金面上项目的资助。

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1 条评论

  • 冷场专家
    冷场专家 读者

    这个示踪思路挺巧,区分来源更清楚了

    上海上海市
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